jueves, 27 de mayo de 2010

PATRONES DE SUTURA

En la entrada de "Suturas" he explicado paso a paso la técnica de sutura y a continuación mostraré algunos de los patrones de sutura más utilizados.


PATRONES DE SUTURA SIMPLE


Interrumpida simple.
Un punto interrumpido simple se realiza insertando la aguja a través del tejido en un lado de la incisión o herida, pasándolo hacia el lado opuesto y anudándolo. El nudo ha de quedar fuera de la incisión. Las suturas deben de colocarse aproximadamente a 2-3 mm del borde cutáneo.
La inversión de la piel causa un cicatrización insuficiente, por lo que debemos asegurarnos de que los puntos no estén muy apretados y de que los bordes de la herida estén correctamente afrontados.
La ventaja primaria de este tipo de suturas, es que la pérdida de un punto no trae como consecuencia la dehiscencia de toda la sutura; por el contrario al realizar tantos nudos dejamos una gran cantidad de material extraño (nudos) en la herida.



En U horizontal.
Se realizan insertando la aguja sobre el lado lejano de la incisión, pasándola a través de la incisión y sacándola sobre el lado cercano; avanzamos con la aguja entre 6-8 mm a lo largo de la incisión y reintroducimos en la piel sobre el lado cercano, cruzamos la incisión para acabar saliendo por el lado lejano y atamos el nudo.



Puntos en X.
Serían un modificación de los puntos en U, formando una cruz sobre o debajo de la incisión.



En U vertical.
Se introduce la aguja aproximadamente 8-10 mm desde el borde incisional sobre un lado, pasamos a través de la línea de incisión y salimos a una distancia igual sobre el lado opuesto de la incisión. La aguja es revertida e insertada a través de la piel sobre el mismo lado, aproximadamente a 4 mm desde el borde cutáneo y se ata el nudo. Esto puntos son más fuertes que los punto en U horizontales.



PATRONES DE SUTURA CONTÍNUA.

Continua simple.
Consiste en una serie de puntos interrumpidos simples con nudo en cada extremo, es decir, la sutura es continua entre los nudos. Para comenzar una línea de sutura simple, se coloca y anuda un punto interrumpido simple, pero sólo se corta el trozo de hilo no unido a la aguja. Al aguja es dirigida a través de la piel, perpendicular a la incisión; de este modo la línea de sutura resultante tiene un punto perpendicular a la línea incisional por debajo del tejido, mientras que el avance hacia delante va por encima de la misma. Para finalizar este tipo de sutura, el extremo del hilo en la aguja se ata con la última lazada de la sutura que es exterior a los tejidos.
Este tipo de sutura ofrece un buena aposición tisular y es relativamente hermética al aire y líquidos, en comparación con una serie de puntos interrumpidos simples.



Lembert.
Es un patrón invaginante, es decir, provoca una inversión de los labios de la herida; a menudo se utiliza para el cierre de vísceras huecas. La aguja penetra la serosa y la muscular aproximadamente a 8-10 mm desde el borde incisional y sale cerca del margen de la herida sobre el mismo lado; a continuación pasa sobre la incisión y penetra aproximadamente a 3-4 mm del margen de la herida y sale a 8-10 mm más allá de la incisión.



Connell y Cushing.
Utilizadas para cerrar órganos huecos porque causan inversión tisular y establecen un sello hermético a los líquidos. Ambos patrones son similares, excepto que en el primero se penetra el lumen, mientras que el segundo sólo se extiende hasta el área submucosa.
La línea se sutura se comienza con un punto interrumpido simple o en U vertical. La aguja se avanza en paralelo a la incisión y se introduce dentro de la serosa, pasando a través de las superficies muscular y mucosa. Desde la superficie profunda, lumen en el caso del patrón de Connell, la aguja se avanza en paralelo a lo largo de la incisión y se retorna a través de los tejidos hasta la superficie serosa. Una vez fuera de la víscera, aguja y sutura pasan a través de la incisión y se introducen en un punto que se corresponde con el punto de salida sobre el lado contralateral. Entonces la sutura se repite; la sutura debe atravesar la incisión de forma perpendicular. Cuando se ajusta la incisiónse invierte.


miércoles, 26 de mayo de 2010

*CURAS*

CURA DE HERIDAS

Definición: Actuaciones de enfermería encaminadas a mantener unas condiciones fisiológicas y de higiene en la herida que favorezcan y aceleren el proceso de cicatrización.

Objetivo: Recuperar el deterioro de la integridad cutánea, evitar la infección, controlar la hemorragia y disminuir el tiempo de cicatrización.

Material: Material básico de curas: pinzas y tijeras de distintos tipos, paño estéril, solución salina, solución antiséptica de clorhexidina al 2% o solución de povidona yodada al 10%, apósito estéril, guantes y gasas estériles, vendas de gasa, de crepe, adhesivas, de algodón, etc., jeringas de distinta capacidad, fármacos tópicos, esparadrapo hipoalérgico, tiras adhesivas para aproximación de bordes, equipo para toma de cultivo, férulas de metal-goma espuma, bateas de distinto tamaño y forma y gafas protectoras y mascarilla, si hubiese riesgo de aspersión.

Método:

  1. Informar al paciente sobre la técnica a realizar y pedir su colaboración.
  2. Preservar la intimidad del paciente y colocarlo en posición adecuada.
  3. Constatar si el paciente tiene algún tipo de alergia.
  4. Valorar la herida para establecer el tipo de tratamiento a aplicar.
  5. Preparar el material necesario para la realización de la cura.
  6. Lavado de manos y colocación de guantes.
  7. Toma de muestras de exudado si existe sospecha o signos de infección de la herida.
  8. Limpieza de la herida con suero fisiológico y/o solución jabonosa.
  9. Desinfección de la herida con solución antiséptica si procede: digluconato de clorhexidina 2% o solución de povidona yodada al 10%.
  10. Secado de la herida con gasas estériles.
  11. Aplicar suturas según el tipo de herida, si fuese necesario.
  12. Aplicar drenaje en la herida, si ésta lo precisa.
  13. Aplicar fármacos tópicos según el tipo de herida y si se considera necesario.
  14. Cubrir la herida con apósito estéril y/o vendaje adecuado según la localización y características de la herida.
  15. Profilaxis antitetánica o actualización del calendario de vacunas según proceda.
  16. Registrar en la historia de salud del paciente.

Educación al paciente y familia:
- Enseñar al paciente, familia o cuidador a observar la evolución de la herida, las medidas higiénicas adecuadas y la necesidad de mantener la asepsia cuando se lleve a cabo el cuidado de la herida y los signos de una mala evolución de la herida: inflamación, infección, cambios de color de la piel, calor local etc.
- El paciente y/o familia debe comunicar al personal de enfermería cualquier cambio que se produzca en la herida.
- En atención domiciliaria, valorar el entorno y determinar la adecuación de sus condiciones físicas para llevar a cabo el correcto cuidado de la herida; comprobar especialmente si existe una luz adecuada, agua corriente, limpieza etc.
- Según las características de la herida se puede instruir a la familia o cuidador para realizar el cuidado de la misma.
- Enseñar al paciente y familia las medidas higiénicas y las recomendaciones adecuadas para el baño o la ducha.
- Indicar la importancia de tomar/administrar correctamente la medicación prescrita y seguir la dieta adecuada.
- El paciente debe mantener el reposo adecuado, si así se ha indicado, y el cambio de posturas recomendadas.

lunes, 3 de mayo de 2010

*SUTURA*

PROCEDIMIENTO DE SUTURA

Definición: Técnica utilizada para la aproximación de los bordes de una herida con el fin de conseguir un proceso de cicatrización por primera intención.

Objetivo: Cerrar la herida por aproximación de los bordes evitando dehiscencias, infecciones y malformaciones cicatriciales.

Material: Material básico en el cuidado de las heridas, paño estéril, pinzas de disección con y sin dientes, porta-agujas, pinzas de mosquito rectas y curvas para hemostasia, tijeras recta y curva de punta fina, suturas con agujas atraumáticas triangulares curvadas, seda según el tipo de piel, la localización de la herida y la edad del paciente, grapas disponibles en grapadoras desechables precargadas y suturas adhesivas (tiras de aproximación estériles).

Método:

  1. Informar al paciente sobre la técnica a realizar y pedir su colaboración.
  2. Constatar si el paciente tiene algún tipo de alergia o dolor.
  3. Información y preparación del paciente.
  4. Rasurado de la zona si procede.
  5. Preparación del campo e instrumental estéril.
  6. Lavado de manos.
  7. Colocación de guantes estériles.
  8. Lavado con solución salina de la lesión y zona perilesional.
  9. Lavado de la lesión y zona perilesional con solución de clorhexidina al 2% o povidona yodada al 10%.
  10. Retirada de restos de antiséptico mediante lavado por arrastre con solución salina.
  11. Desbridamiento de tejido desvitalizado y hemostasia, si procede.
  12. Comprobar la tensión existente entre los bordes.
  13. Sujetar el borde de la herida con la pinza de disección con dientes y levantar unos milímetros.
  14. Con la aguja curva en el porta, en la mano dominante, y con la punta perpendicular a la piel y presión firme, introducirla a unos 3mm del borde.
  15. Coger el porta con el dedo índice extendido para que sirva de apoyo. La mano debe girar a nivel de la muñeca siguiendo la dirección de la aguja.
  16. Traspasada la aguja por todo el tejido, se quita el porta y con él se estira desde la punta de la aguja haciendo pasar la sutura.
  17. Con la pinza de disección de dientes se sujeta el borde contrario de la herida levantando éste unos milímetros del lecho de la lesión.
  18. Repetir la técnica de los 4 puntos anteriores, pero desde el interior de la herida.
  19. Anudar: Coger con la mano izquierda el extremo distal de la sutura. Con la parte distal del porta-agujas, dar 2 ó 3 vueltas a la sutura y coger con el porta el extremo distal sujeto con la mano. Deslizar sobre este último el entrelazado del porta y tirar de ambos extremos firmemente y hacia un lado de la unión de los bordes, para que el nudo no quede sobre esta unión. Realizar la misma maniobra en sentido contrario, haciendo un nudo inverso al anterior. Los nudos deben estar alineados en el mismo lado de la incisión.
  20. Limpiar la zona de restos de sangre.
  21. Limpiar con solución antiséptica.
  22. En caso de utilizar grapas aproximar y alinear los bordes de la heridas y grapar.
  23. En caso de heridas superficiales se utilizarán tiras adhesivas.
  24. Colocar apósito.
  25. Valorar estado vacunal y administrar profilaxis antitetánica, si precisa.
  26. Registrar el procedimiento en la historia de salud del paciente.
Educación al paciente y familia:
- Informar sobre los cuidados diarios de la herida.
- Todos los días después de la ducha:
  1. Secar la herida sin frotar.
  2. Desinfectar con solución antiséptica: digluconato de clorhexidina al 2% o povidona yodada al 10%.
  3. Esperar a que se seque el antiséptico.
  4. Cubrir con un apósito estéril.
  5. Vigilar signos de mala evolución de la cicatrización.
Observaciones: Se puede retirar algún punto y realizarlo de nuevo si, tras valorar el resultado de la sutura, éste no es el adecuado.


Las fotos pertenecen al taller de Medico-Quirurgia que realizamos en 2º curso, la práctica consistía en aprender las diferentes técnicas de surura sopre una pata de cerdo. La primera pertenece a una sutura discontinua y la segunda es una sutura continua simple.

PROCEDIMIENTO RETIRADA DE SUTURAS

Definición: Conjunto de actuaciones a realizar para la retirada de las suturas utilizadas en la aproximación de los bordes de una herida.

Objetivo: Retirar el material de sutura sin dolor y prevenir la formación de dehiscencias.

Material: Guantes y gasas estériles, paños estériles, batea, solución salina, solución antiséptica, pinzas de disección sin dientes, tijeras de punta recta y de punta curva, hoja de bisturí del nº 11, tiras de aproximación estériles y pinza quita agrafes.

Método:

  1. Informar al paciente sobre la técnica a realizar y pedir su colaboración.
  2. Valorar la cicatrización de la herida: comprobar que los márgenes del la herida se han cerrado perfectamente y, en caso contrario, no retirar los puntos o quitarlos de forma alterna.
  3. Si existen costras o restos de sangre, limpiar con suero fisiológico.
  4. Limpiar la herida con gasa empapada con solución antiséptica.
  5. En sutura con seda:
    • Sujetar cada punto con las pinzas de disección, estirar hacia arriba con cuidado separándolo ligeramente de la piel.
    • Cortar con las tijeras o con la hoja de bisturí el extremo de la sutura entre la piel y el nudo y lo más próximo a la piel.
    • Estirar con la pinza ligeramente, conteniendo la piel desde la parte en que se retira el punto para evitar la aparición de dehiscencias.
    • Si existe el riesgo de una pequeña dehiscencia, poner tira de aproximación estéril para contención de la tensión.
    • Limpieza de restos en la zona con solución salina .
    • Administrar antiséptico local si procede.
    • Colocar apósito y sujeción del mismo con esparadrapo hipoalérgico, si está indicado.
  6. En sutura metálica (grapas):
    • en la asepsia utilizar solución antiséptica.
    • utilizar quita grapas estéril, introduciendo la parte cóncava debajo del agrafe.
    • cerrar la pinza para producir la abertura del agrafe y retirarlo.
  7. Aplicación de vendaje para sujetar el apósito si la localización de la cicatriz lo requiere. Éste nunca debe ser compresivo, sólo de sujeción.
  8. Registrar en la historia todo los procesos realizados y concertar cita para cambio de apósito y revisión de la cicatriz.

Educación al paciente y familia:
Enseñar al paciente y familia las medidas higiénicas adecuadas para proteger la cicatriz durante
el baño o la ducha si ésta, por sus características, no debe mojarse, la forma de cambiar el apósito y las medidas de asepsia a utilizar, los signos y síntomas que indican infección u otra complicación de la cicatriz y las medidas de fotoprotección en la cicatriz

Observaciones: El periodo de tiempo desde la sutura hasta su retirada será normalmente
de 7 días (variando según la localización de la herida y del tipo de
sutura: en la cara 5 días, en espalda 10 días...).

miércoles, 28 de abril de 2010

RECOGIDA Y TOMA DE MUESTRAS

OBTENCIÓN DE MUESTRA DE ORINA

Definición: Obtención de muestra de orina con fines diagnósticos.

Objetivo: Obtener la muestra de una manera adecuada para la disponer de
resultados fiables.

Material: Contenedores (estériles para cultivo; para orina de 24 horas; pequeños para sedimento), bolsas estériles (niños), gasas estériles, jabón neutro y gasas, guantes, jeringa y aguja y etiquetas identificativas.

Método:


- Recogida de orina para urocultivo en adultos:

  1. Informar al usuario de la necesidad de una adecuada higiene previa a la recogida de orina, con agua y jabón, limpiando siempre de delante hacia detrás en dirección al ano.
  2. Recoger la orina de la primera micción del día, desechando la primera y última parte de ésta, en un contenedor estéril, siendo suficiente la cantidad de 5 a 10 cc.
  3. Tapar el bote sin tocar la parte interior.

- Recogida de orina para urocultivo en niños:

  1. Informar a los padres sobre la higiene adecuada como en el apartado anterior.
  2. Utilizar bolsas estériles adhesivas que se colocan alrededor de la zona genital.
  3. Para evitar contaminación de la muestra, la bolsa no debe permanecer más de 20 minutos aproximadamente. En el caso de no recoger en este tiempo la muestra se debe cambiar la bolsa repitiendo el lavado de la zona.
  4. Una vez regida la muestra, retirar la bolsa y cerrarla adecuadamente, sin trasvasar la orina a otro recipiente.

- Recogida de orina para urocultivo en usuarios con sonda vesical:

  1. Limpiar con antiséptico el extremo visible de la sonda, en dirección hacia la bolsa.
  2. Pinzar la sonda y cuando el paciente muestre necesidad de miccionar, despinzar y recoger directamente la orina en el frasco estéril.
  3. En el caso de que la bolsa colectora sea de uso prolongado, pinchar en la zona de látex determinada para tal fin y extraer la orina.

- Recogida de orina 24h:

  1. Informar al usuario de la necesidad de una adecuada higiene.
  2. Desechar la primera micción del día anterior a la entrega de la muestra. Recogiendo todas las micciones incluyendo la primera de la mañana del día de la entrega.
  3. Recoger la orina en contenedores para 24 horas y guardarlos en la nevera (zona de verduras).

ANÁLISIS DE ORINA MEDIANTE TIRA REACTIVA

Definición: Actuaciones de enfermería para determinar algunos parámetros en la orina, con fines diagnósticos, utilizando una tira reactiva específica.

Objetivo: Determinar la presencia de alteraciones en la composición y características de la orina (hematuria, glucosuria, cetonuria, proteinuria, etc.).

Material: Tiras reactivas específicas, recipiente de orina, guantes y temporizador (reloj, cronómetro…).

Método:

  1. Explicar al usuario la técnica que debe aplicar para la recogida de orina y pedirle su colaboración.
  2. Una vez recogida la muestra se introduce la tira en el recipiente durante dos segundos.
  3. Extraer la tira del recipiente, comprobando que está completamente humedecida y eliminar el exceso de orina golpeando suavemente la tira sobre el borde del recipiente. No limpiar ni secar. Empezar a controlar el tiempo.
  4. Esperar el tiempo necesario indicado en las instrucciones del envase de las tiras reactivas.
  5. Comparar el color de la tira con la tabla de colores del frasco contenedor de las tiras.
  6. Registrar el procedimiento, fecha, hora, incidencias y resultado en la historia de salud.

Observaciones: Comprobar la conservación y la fecha de caducidad de las tiras.

EXTRACCIONES DE SANGRE

Definición: Obtención de muestra de sangre venosa para su posterior análisis en el laboratorio.

Objetivo: Obtener una muestra de sangre de manera adecuada para efectuar los distintos análisis: Hematológico, bioquímico y microbiológico.

Material: Guantes, compresor de goma, alcohol de 70º, algodón, tubos y vacutainer, jeringas y agujas de seguridad y etiquetas identificativas.

Método:

  1. Lavado de manos y uso de guantes.
  2. Identificación del usuario y comprobación de los datos.
  3. Verificar que el usuario esté en ayunas si precisa.
  4. Identificar los tubos con la etiqueta del nº de registro y fecha de extracción.
  5. Elección de la zona de punción más fácil, mediante la palpación de la vena: Flexura del codo o dorso de la mano y en el caso de palpación deficitaria se aconseja dejar el brazo colgando e indicar el movimiento abrir y cerrar la mano o masaje de frotamiento, ayudando con la mano a la circulación de retorno y/ o presión con los dedos en la zona de punción.
  6. Colocar el compresor de goma sin apretar en exceso.
  7. Desinfección de la zona de punción seleccionada.
  8. Fijar la vena mediante estiramiento de la piel y tejido subcutáneo.
  9. Realizar la punción con un ángulo de 30º – 40 º y con el bisel hacia arriba utilizando: Sistema vacutainer (fijar la campana para evitar que se mueva en el intercambio de los tubos) o uso de palomilla o jeringa y aguja (con esta técnica conviene dejar una pequeña separación entre el émbolo y el cuerpo de la jeringa, la aspiración será lenta) .
  10. Retirar el compresor e indicar al usuario que permanezca durante 3–5 minutos presionando en la zona de punción con el algodón y el brazo estirado, para favorecer la hemostasia y evitar la aparición de hematoma. En el caso de pacientes anticoagulados, aumentar el tiempo de presión de 10 a 15 minutos.
  11. Colocar los tubos en la gradilla en posición vertical mezclando bien la sangre en los tubos que contienen anticoagulante.
  12. Desechar el material utilizado en el contenedor adecuado.

Educación al paciente y familia: Informar sobre la importancia de presionar la zona de punción, para evitar hematoma, y sangrado, con el brazo estirado. Se le informará cuándo y dónde recoger los resultados.

Observaciones:

- Aplicar a todos los usuarios las medidas específicas de prevención de riesgos biológicos.
- No agitar los tubos secos.
- Cuando se realizan extracciones a domicilio mantener la verticalidad en el transporte de los tubos.
- Nunca encapsular las agujas.

OBTENCIÓN DE MUESTRAS PARA LA DETECCIÓN DE METABOLOPATÍAS.

Definición: Obtención de muestra de sangre en los primeros días de vida con el fin de detectar enfermedades metabólicas congénitas.

Objetivo: Obtener la muestra de sangre adecuada en los primeros días de vida con el fin de realizar lo antes posible los cribados neonatales de las enfermedades metabólico-congénitas.

Material: Lancetas estériles, papeles de filtro Wathman, alcohol de 70º, gasas estériles, guantes i suero fisiológico.

Método:

  1. Explicar a los padres el procedimiento que se va a llevar a cabo.
  2. Cumplimentar todos los datos de los formularios antes de realizar la prueba.
  3. Activar la zona del talón con masaje, o bien con calor durante 3 a 5 minutos utilizando para ello un paño o compresa suave empapada en agua tibia.
  4. Desinfectar el área con gasa empapada en alcohol de 70º, déjelo secar al aire libre.
  5. Haga una punción en el talón con una lanceta estéril y desechable en una de las caras laterales (evitando la zona central más próxima al calcáneo y menos irrigada y la parte plantar del talón). Nunca utilizar una aguja por peligro de osteocondritis.
  6. Limpiar la primera gota de sangre con una gasa estéril. Dejar que se forme otra gota grande de sangre (para aumentar el flujo de sangre, aplicar una presión muy leve de forma intermitente con nuestra mano en el área que rodea el sitio de punción). Tocar la gota grande levemente con el papel de filtro. Dejar que la sangre se absorba y que llene el círculo por completo con una sola aplicación de la gota grande de sangre. Aplique la sangre solamente a uno de los lados del papel de filtro. Llenar los círculos restantes de igual forma.
  7. Dejar secar el papel Wathman a temperatura ambiente. Los papeles se dejarán secar durante unas tres horas en posición horizontal y sin apilarlos, no debe someterse a calor excesivo, y no debe colocarse sobre superficies húmedas. Después podrán ser enviados por correo al laboratorio de referencia. Si se guardan se hará en lugar seco y oscuro.
  8. Registrar en la historia de salud.

Observaciones:
- La primera muestra se recoge en la maternidad antes del alta y en cuanto a la segunda, casi todos los autores proponen que el cribado se realice entre el 3º y el 5º día.
- En cualquier caso, es necesario que haya trascurrido 48 horas desde
el inicio de la alimentación para la determinación de la fenilcetonuria.
- Los profesionales de atención primaria deben identificar todos aquellos
recién nacidos, no sometidos a tests de cribado para metabolopatías
congénitas, antes de los 10-15 días de vida:

  1. RN nacidos en el domicilio o con altas precoces
  2. RN pertenecientes a colectivos marginales
  3. RN pretérmino o con patología neonatal ingresados

- En los recién nacidos prematuros de menos de 32 semanas de edad gestacional se realizará una segunda determinación a los 7-14 días (o a las 32 semanas de edad corregida), así como a los recién nacidos que hayan precisado cuidados intensivos.

RECOGIDA DE EXUDADOS

Definición: Obtención de muestra de un exudado corporal con fines diagnósticos.

Objetivo: Obtener la cantidad adecuada de muestra para ayudar al diagnóstico y tratamiento.

Material: El específico para cada toma de exudado. Torundas específicas de cultivo.

Método: Lavado de manos y uso de guantes.

- Exudados faríngeos:

  1. Confirmar que la persona no está tomando antibióticos.
  2. Informar al usuario sobre la técnica a realizar.
  3. Indicar que abra la boca, sujetar la lengua con un depresor.
  4. Extraer una torunda estéril y pasarla por varios puntos de la faringe, evitando tocar otras zonas de la cavidad bucal.
  5. Introducir la torunda en la funda de protección, rotular la muestra y registrar.

- Exudado umbilical:

  1. Recoger exudado del ombligo, no del extremo del cordón, antes de la aplicación de pomadas o antibióticos.

- Exudado nasal:

  1. Con una de torunda fina, para cada orificio nasal, recoger la muestra del interior del orifico nasal.

- Exudado ótico:

  1. Tirar del lóbulo hacía abajo y atrás (niños), y arriba y atrás (adultos).
  2. Recoger la muestra de cada oído introduciendo la torunda y girándola suavemente.

- Exudado conjuntival:

  1. Abrir el ojo con gasas estériles sujetando el párpado.
  2. Utilizando una torunda diferente para cada ojo, previamente humedecida con suero fisiológico, se pasa varias veces por la parte inferior de este, de ángulo interno a externo.

- Exudado de heridas:

  1. Humedecer la zona con suero fisiológico, antes de tomar la muestra.
  2. Retirar la costra, si existe, para tomar la muestra del exudado de debajo.
  3. Si existe ampolla, limpieza de la zona, pinchar la ampolla con aguja y jeringa estéril y tomar la muestra de esa zona.

jueves, 15 de abril de 2010

MEDICIÓN Y VALORACIÓN DE CONSTANTES VITALES

MEDICIÓN Y VALORACIÓN DE LA TEMPERATURA CORPORAL.

Objetivo: Conocer la temperatura corporal del usuario y detectar posibles alteraciones.

Material: Termómetro, gasas no estériles y antiséptico.

Método:
  1. Informar al usuario del procedimiento buscando su colaboración.
  2. Limpiar el termómetro con una gasa impregnada de antiséptico.
  3. Colocar el termómetro en la zona de medición más adecuada: Zona axilar o pliegue inguinal (recomendable en adultos o niños mayores de 6 años. Colocar el termómetro en contacto con la piel, mantener 5 minutos y leer temperatura.); Zona rectal (recomendado en niños menores de 6 años. Colocar al paciente en decúbito lateral, separar las nalgas e introducir el termómetro hasta alcanzar el recto. Mantener 3 minutos, retirar y leer.).
  4. Limpiar y mantener de forma aséptica el termómetro hasta nuevo uso.
  5. Registrar la temperatura.

Observaciones:

- Temperatura media normal:

  • Axilar e inguinal 36-37ºC.
  • Oral 0.5ºC mayor que la axilar.
  • Rectal 1ºC más que la temperatura axilar.

- Valoración de los resultados de la medición:

  • Febrícula: entre 37ºC y 38ºC.
  • Fiebre moderada: entre 38ºC y 39ºC.
  • Fiebre alta: entre 39ºC y 40ºC.
  • Hipertermia: más de 40ºC.

MEDICIÓN Y VALORACIÓN DEL LATIDO CARDIACO.

Definición: Determinar y valorar la frecuencia, el ritmo y la amplitud del latido cardiaco.

Objetivo: Conocer las características del latido cardiaco y detectar posibles anomalías.

Material: Reloj con segundero y fonendoscopio.

Método:

  1. Informar al paciente del procedimiento a seguir.
  2. Asegurarse de que antes de la medición el paciente no ha realizado ejercicio físico.
  3. Colocar al paciente en posición cómoda y en reposo.
  4. Realizar la técnica: Por palpación (apoyar la yema de los dedos índice, mediano y anular sobre la arteria radial ejerciendo una ligera presión) o por auscultación (colocar el fonendoscopio entre el 4º y 5º espacio intercostal izquierdo).
  5. Contar el número de latidos por minuto y determinar su ritmo e intensidad.
  6. Registrar el nº de pulsaciones, ritmo e intensidad de los latidos así como la técnica empleada para su medición.

Observaciones:

- Valores normales de frecuencia cardiaca:

  • Recién nacido: 90-150 ppm.
  • Preescolar: 80-120 ppm.
  • Escolar: 70-110 ppm.
  • Adolescentes: 60-100 ppm.

- Alteraciones de la frecuencia cardiaca:

  • Bradicardia: cuando el pulso está por debajo de 60 ppm.
  • Taquicardia: cuando el pulso está por encima de lo normal.
  • Ritmo: anotar si el ritmo es regular, con pausas o con latidos adicionales.

MEDICIÓN Y VALORACIÓN DE LA FRECUENCIA RESPIRATORIA.

Definición: Medición del número de respiraciones por minuto, así como las características de las mismas.

Objetivo: Determinar el nº de respiraciones por minuto y la calidad de los movimientos respiratorios, a fin de detectar posibles anomalías.

Material: Fonendoscopio y reloj con secundero.

Método:

  1. Asegurarse de que el usuario no ha realizado actividad física y no está alterado emocionalmente.
  2. Contabilizar el número de respiraciones durante 1 minuto, mediante uno de los siguientes procedimientos: observación de las elevaciones del tórax y abdomen, colocación de la mano sobre el tórax o abdomen o bien usando el fonendoscopio cuando las características de la respiración lo requieran.
  3. Observar la regularidad, tipo y características de la respiración.
  4. Registrar la información.

Observaciones:

- Valores normales de frecuencia respiratoria:

  • Recién nacido y lactante pequeño: 30-50 rpm.
  • Lactante grande: 20-40 rpm.
  • Preescolar: 15-25 rpm.
  • Escolar: 17-23 rpm.
  • Adolescente y adulto: 13-18 rmp.

- Hallazgos anormales:

  • Bradipnea: frecuencia inferior a 12 rpm.
  • Taquipnea: frecuencia superior a 20 rpm; es una respiración superficial y rápida.
  • Hiperpnea o Hiperventilación: respiración profunda y rápida de frecuencia mayor a 20 rpm.
  • Apnea: Ausencia de movimientos respiratorios.
  • Disnea: Sensación subjetiva del paciente de dificultad o esfuerzo para respirar.
  • Ortopnea: Incapacidad de respirar cómodamente en posición de decúbito.

MEDICIÓN Y VALORACIÓN DE LA PRESIÓN ARTERIAL.

Definición: Medición de la presión arterial, sistólica y diastólica.

Objetivo: Conocer las cifras tensionales y detectar posibles alteraciones.

Material: Esfingomanómetro y fonendoscopio.

Método:

  1. Informar al usuario de la técnica y solicitar su colaboración.
  2. Asegurarse de que está en reposo al menos 10 minutos antes de la toma de tensión arterial.
  3. Colocar al paciente en posición cómoda y relajada, con el brazo apoyado a la altura del corazón, en posición extendida, palma de la mano en supinación y sin presión en el brazo por la ropa.
  4. La primera toma se realizara en los dos brazos se debe elegir como brazo control aquel dónde la cifra sea más alta.
  5. Elegir el tamaño del manguito según la edad y la constitución física.
  6. El manguito debe quedar 3cm. por encima de la flexura del codo.
  7. Palpar la arteria braquial y colocar la membrana del fonendoscopio sobre ella.
  8. Insuflar el manguito hasta que el esfingomanómetro alcance 20 ó 30 mmHg por encima del último latido escuchado.
  9. Abrir la válvula ligeramente, descenderá lentamente la aguja del manómetro, tomamos como valor de la tensión arterial sistólica el marcado cuando el oído percibe el primer ruido arterial y como diastólica cuando desaparece el ruido arterial.
  10. Retirar el manguito, vaciar completamente el aire y registrar.

Observaciones:

- Calibrar el tensiómetro periódicamente.

- No tomar la tensión en el brazo de una paciente mastectomizada, con fístula arterio-venosa o amputación.

- En caso de tener que medir la presión arterial en la pierna, se aplica el manguito en el muslo y se registra el pulso en el hueco poplíteo.

- La OMS establece:

  • Hipertensión arterial si TAS es mayor o igual a 14o mmHg y TAD es mayor o igual de 90 mmHg.
  • Hipotensión arterial si TAS es menor de 100 mmHg en adultos.