miércoles, 28 de abril de 2010

RECOGIDA Y TOMA DE MUESTRAS

OBTENCIÓN DE MUESTRA DE ORINA

Definición: Obtención de muestra de orina con fines diagnósticos.

Objetivo: Obtener la muestra de una manera adecuada para la disponer de
resultados fiables.

Material: Contenedores (estériles para cultivo; para orina de 24 horas; pequeños para sedimento), bolsas estériles (niños), gasas estériles, jabón neutro y gasas, guantes, jeringa y aguja y etiquetas identificativas.

Método:


- Recogida de orina para urocultivo en adultos:

  1. Informar al usuario de la necesidad de una adecuada higiene previa a la recogida de orina, con agua y jabón, limpiando siempre de delante hacia detrás en dirección al ano.
  2. Recoger la orina de la primera micción del día, desechando la primera y última parte de ésta, en un contenedor estéril, siendo suficiente la cantidad de 5 a 10 cc.
  3. Tapar el bote sin tocar la parte interior.

- Recogida de orina para urocultivo en niños:

  1. Informar a los padres sobre la higiene adecuada como en el apartado anterior.
  2. Utilizar bolsas estériles adhesivas que se colocan alrededor de la zona genital.
  3. Para evitar contaminación de la muestra, la bolsa no debe permanecer más de 20 minutos aproximadamente. En el caso de no recoger en este tiempo la muestra se debe cambiar la bolsa repitiendo el lavado de la zona.
  4. Una vez regida la muestra, retirar la bolsa y cerrarla adecuadamente, sin trasvasar la orina a otro recipiente.

- Recogida de orina para urocultivo en usuarios con sonda vesical:

  1. Limpiar con antiséptico el extremo visible de la sonda, en dirección hacia la bolsa.
  2. Pinzar la sonda y cuando el paciente muestre necesidad de miccionar, despinzar y recoger directamente la orina en el frasco estéril.
  3. En el caso de que la bolsa colectora sea de uso prolongado, pinchar en la zona de látex determinada para tal fin y extraer la orina.

- Recogida de orina 24h:

  1. Informar al usuario de la necesidad de una adecuada higiene.
  2. Desechar la primera micción del día anterior a la entrega de la muestra. Recogiendo todas las micciones incluyendo la primera de la mañana del día de la entrega.
  3. Recoger la orina en contenedores para 24 horas y guardarlos en la nevera (zona de verduras).

ANÁLISIS DE ORINA MEDIANTE TIRA REACTIVA

Definición: Actuaciones de enfermería para determinar algunos parámetros en la orina, con fines diagnósticos, utilizando una tira reactiva específica.

Objetivo: Determinar la presencia de alteraciones en la composición y características de la orina (hematuria, glucosuria, cetonuria, proteinuria, etc.).

Material: Tiras reactivas específicas, recipiente de orina, guantes y temporizador (reloj, cronómetro…).

Método:

  1. Explicar al usuario la técnica que debe aplicar para la recogida de orina y pedirle su colaboración.
  2. Una vez recogida la muestra se introduce la tira en el recipiente durante dos segundos.
  3. Extraer la tira del recipiente, comprobando que está completamente humedecida y eliminar el exceso de orina golpeando suavemente la tira sobre el borde del recipiente. No limpiar ni secar. Empezar a controlar el tiempo.
  4. Esperar el tiempo necesario indicado en las instrucciones del envase de las tiras reactivas.
  5. Comparar el color de la tira con la tabla de colores del frasco contenedor de las tiras.
  6. Registrar el procedimiento, fecha, hora, incidencias y resultado en la historia de salud.

Observaciones: Comprobar la conservación y la fecha de caducidad de las tiras.

EXTRACCIONES DE SANGRE

Definición: Obtención de muestra de sangre venosa para su posterior análisis en el laboratorio.

Objetivo: Obtener una muestra de sangre de manera adecuada para efectuar los distintos análisis: Hematológico, bioquímico y microbiológico.

Material: Guantes, compresor de goma, alcohol de 70º, algodón, tubos y vacutainer, jeringas y agujas de seguridad y etiquetas identificativas.

Método:

  1. Lavado de manos y uso de guantes.
  2. Identificación del usuario y comprobación de los datos.
  3. Verificar que el usuario esté en ayunas si precisa.
  4. Identificar los tubos con la etiqueta del nº de registro y fecha de extracción.
  5. Elección de la zona de punción más fácil, mediante la palpación de la vena: Flexura del codo o dorso de la mano y en el caso de palpación deficitaria se aconseja dejar el brazo colgando e indicar el movimiento abrir y cerrar la mano o masaje de frotamiento, ayudando con la mano a la circulación de retorno y/ o presión con los dedos en la zona de punción.
  6. Colocar el compresor de goma sin apretar en exceso.
  7. Desinfección de la zona de punción seleccionada.
  8. Fijar la vena mediante estiramiento de la piel y tejido subcutáneo.
  9. Realizar la punción con un ángulo de 30º – 40 º y con el bisel hacia arriba utilizando: Sistema vacutainer (fijar la campana para evitar que se mueva en el intercambio de los tubos) o uso de palomilla o jeringa y aguja (con esta técnica conviene dejar una pequeña separación entre el émbolo y el cuerpo de la jeringa, la aspiración será lenta) .
  10. Retirar el compresor e indicar al usuario que permanezca durante 3–5 minutos presionando en la zona de punción con el algodón y el brazo estirado, para favorecer la hemostasia y evitar la aparición de hematoma. En el caso de pacientes anticoagulados, aumentar el tiempo de presión de 10 a 15 minutos.
  11. Colocar los tubos en la gradilla en posición vertical mezclando bien la sangre en los tubos que contienen anticoagulante.
  12. Desechar el material utilizado en el contenedor adecuado.

Educación al paciente y familia: Informar sobre la importancia de presionar la zona de punción, para evitar hematoma, y sangrado, con el brazo estirado. Se le informará cuándo y dónde recoger los resultados.

Observaciones:

- Aplicar a todos los usuarios las medidas específicas de prevención de riesgos biológicos.
- No agitar los tubos secos.
- Cuando se realizan extracciones a domicilio mantener la verticalidad en el transporte de los tubos.
- Nunca encapsular las agujas.

OBTENCIÓN DE MUESTRAS PARA LA DETECCIÓN DE METABOLOPATÍAS.

Definición: Obtención de muestra de sangre en los primeros días de vida con el fin de detectar enfermedades metabólicas congénitas.

Objetivo: Obtener la muestra de sangre adecuada en los primeros días de vida con el fin de realizar lo antes posible los cribados neonatales de las enfermedades metabólico-congénitas.

Material: Lancetas estériles, papeles de filtro Wathman, alcohol de 70º, gasas estériles, guantes i suero fisiológico.

Método:

  1. Explicar a los padres el procedimiento que se va a llevar a cabo.
  2. Cumplimentar todos los datos de los formularios antes de realizar la prueba.
  3. Activar la zona del talón con masaje, o bien con calor durante 3 a 5 minutos utilizando para ello un paño o compresa suave empapada en agua tibia.
  4. Desinfectar el área con gasa empapada en alcohol de 70º, déjelo secar al aire libre.
  5. Haga una punción en el talón con una lanceta estéril y desechable en una de las caras laterales (evitando la zona central más próxima al calcáneo y menos irrigada y la parte plantar del talón). Nunca utilizar una aguja por peligro de osteocondritis.
  6. Limpiar la primera gota de sangre con una gasa estéril. Dejar que se forme otra gota grande de sangre (para aumentar el flujo de sangre, aplicar una presión muy leve de forma intermitente con nuestra mano en el área que rodea el sitio de punción). Tocar la gota grande levemente con el papel de filtro. Dejar que la sangre se absorba y que llene el círculo por completo con una sola aplicación de la gota grande de sangre. Aplique la sangre solamente a uno de los lados del papel de filtro. Llenar los círculos restantes de igual forma.
  7. Dejar secar el papel Wathman a temperatura ambiente. Los papeles se dejarán secar durante unas tres horas en posición horizontal y sin apilarlos, no debe someterse a calor excesivo, y no debe colocarse sobre superficies húmedas. Después podrán ser enviados por correo al laboratorio de referencia. Si se guardan se hará en lugar seco y oscuro.
  8. Registrar en la historia de salud.

Observaciones:
- La primera muestra se recoge en la maternidad antes del alta y en cuanto a la segunda, casi todos los autores proponen que el cribado se realice entre el 3º y el 5º día.
- En cualquier caso, es necesario que haya trascurrido 48 horas desde
el inicio de la alimentación para la determinación de la fenilcetonuria.
- Los profesionales de atención primaria deben identificar todos aquellos
recién nacidos, no sometidos a tests de cribado para metabolopatías
congénitas, antes de los 10-15 días de vida:

  1. RN nacidos en el domicilio o con altas precoces
  2. RN pertenecientes a colectivos marginales
  3. RN pretérmino o con patología neonatal ingresados

- En los recién nacidos prematuros de menos de 32 semanas de edad gestacional se realizará una segunda determinación a los 7-14 días (o a las 32 semanas de edad corregida), así como a los recién nacidos que hayan precisado cuidados intensivos.

RECOGIDA DE EXUDADOS

Definición: Obtención de muestra de un exudado corporal con fines diagnósticos.

Objetivo: Obtener la cantidad adecuada de muestra para ayudar al diagnóstico y tratamiento.

Material: El específico para cada toma de exudado. Torundas específicas de cultivo.

Método: Lavado de manos y uso de guantes.

- Exudados faríngeos:

  1. Confirmar que la persona no está tomando antibióticos.
  2. Informar al usuario sobre la técnica a realizar.
  3. Indicar que abra la boca, sujetar la lengua con un depresor.
  4. Extraer una torunda estéril y pasarla por varios puntos de la faringe, evitando tocar otras zonas de la cavidad bucal.
  5. Introducir la torunda en la funda de protección, rotular la muestra y registrar.

- Exudado umbilical:

  1. Recoger exudado del ombligo, no del extremo del cordón, antes de la aplicación de pomadas o antibióticos.

- Exudado nasal:

  1. Con una de torunda fina, para cada orificio nasal, recoger la muestra del interior del orifico nasal.

- Exudado ótico:

  1. Tirar del lóbulo hacía abajo y atrás (niños), y arriba y atrás (adultos).
  2. Recoger la muestra de cada oído introduciendo la torunda y girándola suavemente.

- Exudado conjuntival:

  1. Abrir el ojo con gasas estériles sujetando el párpado.
  2. Utilizando una torunda diferente para cada ojo, previamente humedecida con suero fisiológico, se pasa varias veces por la parte inferior de este, de ángulo interno a externo.

- Exudado de heridas:

  1. Humedecer la zona con suero fisiológico, antes de tomar la muestra.
  2. Retirar la costra, si existe, para tomar la muestra del exudado de debajo.
  3. Si existe ampolla, limpieza de la zona, pinchar la ampolla con aguja y jeringa estéril y tomar la muestra de esa zona.

jueves, 15 de abril de 2010

MEDICIÓN Y VALORACIÓN DE CONSTANTES VITALES

MEDICIÓN Y VALORACIÓN DE LA TEMPERATURA CORPORAL.

Objetivo: Conocer la temperatura corporal del usuario y detectar posibles alteraciones.

Material: Termómetro, gasas no estériles y antiséptico.

Método:
  1. Informar al usuario del procedimiento buscando su colaboración.
  2. Limpiar el termómetro con una gasa impregnada de antiséptico.
  3. Colocar el termómetro en la zona de medición más adecuada: Zona axilar o pliegue inguinal (recomendable en adultos o niños mayores de 6 años. Colocar el termómetro en contacto con la piel, mantener 5 minutos y leer temperatura.); Zona rectal (recomendado en niños menores de 6 años. Colocar al paciente en decúbito lateral, separar las nalgas e introducir el termómetro hasta alcanzar el recto. Mantener 3 minutos, retirar y leer.).
  4. Limpiar y mantener de forma aséptica el termómetro hasta nuevo uso.
  5. Registrar la temperatura.

Observaciones:

- Temperatura media normal:

  • Axilar e inguinal 36-37ºC.
  • Oral 0.5ºC mayor que la axilar.
  • Rectal 1ºC más que la temperatura axilar.

- Valoración de los resultados de la medición:

  • Febrícula: entre 37ºC y 38ºC.
  • Fiebre moderada: entre 38ºC y 39ºC.
  • Fiebre alta: entre 39ºC y 40ºC.
  • Hipertermia: más de 40ºC.

MEDICIÓN Y VALORACIÓN DEL LATIDO CARDIACO.

Definición: Determinar y valorar la frecuencia, el ritmo y la amplitud del latido cardiaco.

Objetivo: Conocer las características del latido cardiaco y detectar posibles anomalías.

Material: Reloj con segundero y fonendoscopio.

Método:

  1. Informar al paciente del procedimiento a seguir.
  2. Asegurarse de que antes de la medición el paciente no ha realizado ejercicio físico.
  3. Colocar al paciente en posición cómoda y en reposo.
  4. Realizar la técnica: Por palpación (apoyar la yema de los dedos índice, mediano y anular sobre la arteria radial ejerciendo una ligera presión) o por auscultación (colocar el fonendoscopio entre el 4º y 5º espacio intercostal izquierdo).
  5. Contar el número de latidos por minuto y determinar su ritmo e intensidad.
  6. Registrar el nº de pulsaciones, ritmo e intensidad de los latidos así como la técnica empleada para su medición.

Observaciones:

- Valores normales de frecuencia cardiaca:

  • Recién nacido: 90-150 ppm.
  • Preescolar: 80-120 ppm.
  • Escolar: 70-110 ppm.
  • Adolescentes: 60-100 ppm.

- Alteraciones de la frecuencia cardiaca:

  • Bradicardia: cuando el pulso está por debajo de 60 ppm.
  • Taquicardia: cuando el pulso está por encima de lo normal.
  • Ritmo: anotar si el ritmo es regular, con pausas o con latidos adicionales.

MEDICIÓN Y VALORACIÓN DE LA FRECUENCIA RESPIRATORIA.

Definición: Medición del número de respiraciones por minuto, así como las características de las mismas.

Objetivo: Determinar el nº de respiraciones por minuto y la calidad de los movimientos respiratorios, a fin de detectar posibles anomalías.

Material: Fonendoscopio y reloj con secundero.

Método:

  1. Asegurarse de que el usuario no ha realizado actividad física y no está alterado emocionalmente.
  2. Contabilizar el número de respiraciones durante 1 minuto, mediante uno de los siguientes procedimientos: observación de las elevaciones del tórax y abdomen, colocación de la mano sobre el tórax o abdomen o bien usando el fonendoscopio cuando las características de la respiración lo requieran.
  3. Observar la regularidad, tipo y características de la respiración.
  4. Registrar la información.

Observaciones:

- Valores normales de frecuencia respiratoria:

  • Recién nacido y lactante pequeño: 30-50 rpm.
  • Lactante grande: 20-40 rpm.
  • Preescolar: 15-25 rpm.
  • Escolar: 17-23 rpm.
  • Adolescente y adulto: 13-18 rmp.

- Hallazgos anormales:

  • Bradipnea: frecuencia inferior a 12 rpm.
  • Taquipnea: frecuencia superior a 20 rpm; es una respiración superficial y rápida.
  • Hiperpnea o Hiperventilación: respiración profunda y rápida de frecuencia mayor a 20 rpm.
  • Apnea: Ausencia de movimientos respiratorios.
  • Disnea: Sensación subjetiva del paciente de dificultad o esfuerzo para respirar.
  • Ortopnea: Incapacidad de respirar cómodamente en posición de decúbito.

MEDICIÓN Y VALORACIÓN DE LA PRESIÓN ARTERIAL.

Definición: Medición de la presión arterial, sistólica y diastólica.

Objetivo: Conocer las cifras tensionales y detectar posibles alteraciones.

Material: Esfingomanómetro y fonendoscopio.

Método:

  1. Informar al usuario de la técnica y solicitar su colaboración.
  2. Asegurarse de que está en reposo al menos 10 minutos antes de la toma de tensión arterial.
  3. Colocar al paciente en posición cómoda y relajada, con el brazo apoyado a la altura del corazón, en posición extendida, palma de la mano en supinación y sin presión en el brazo por la ropa.
  4. La primera toma se realizara en los dos brazos se debe elegir como brazo control aquel dónde la cifra sea más alta.
  5. Elegir el tamaño del manguito según la edad y la constitución física.
  6. El manguito debe quedar 3cm. por encima de la flexura del codo.
  7. Palpar la arteria braquial y colocar la membrana del fonendoscopio sobre ella.
  8. Insuflar el manguito hasta que el esfingomanómetro alcance 20 ó 30 mmHg por encima del último latido escuchado.
  9. Abrir la válvula ligeramente, descenderá lentamente la aguja del manómetro, tomamos como valor de la tensión arterial sistólica el marcado cuando el oído percibe el primer ruido arterial y como diastólica cuando desaparece el ruido arterial.
  10. Retirar el manguito, vaciar completamente el aire y registrar.

Observaciones:

- Calibrar el tensiómetro periódicamente.

- No tomar la tensión en el brazo de una paciente mastectomizada, con fístula arterio-venosa o amputación.

- En caso de tener que medir la presión arterial en la pierna, se aplica el manguito en el muslo y se registra el pulso en el hueco poplíteo.

- La OMS establece:

  • Hipertensión arterial si TAS es mayor o igual a 14o mmHg y TAD es mayor o igual de 90 mmHg.
  • Hipotensión arterial si TAS es menor de 100 mmHg en adultos.